Noroviren sind die häufigste virale Ursache der akuten Gastroenteritis. Mindestens 40 Noroviren sind beschrieben worden, und es tauchen regelmäßig neue Varianten auf. Die Entwicklung, Entstehung und Verbreitung von Noroviren sind nicht vollständig geklärt, insbesondere die Rolle eines potenziellen Tierreservoirs ist unzureichend untersucht. Mehrere Hinweise deuten auf eine Norovirusübertragung zwischen Menschen und Tieren hin. Allerdings gibt es bisher kein in vitro-System zur Untersuchung der Übertragung zwischen verschiedenen Spezies. Im Rahmen dieses Projektes soll ein ex vivo-System auf der Grundlage von Darmbiopsien verschiedener Tierarten entwickelt werden, um die Norovirusübertragung zwischen verschiedenen Spezies experimentell zu untersuchen. Es werden Biopsien von Hunden, Schweinen und Hühnern verwendet, da diese in großer Zahl vorkommen und in engem Kontakt mit Menschen stehen. Das Risiko einer Übertragung ist daher erhöht. Präzisionsgeschnittene Darmabschnitte werden etabliert und verwendet, um die Bindung, das Eindringen/Internieren und die Replikation des Norovirus in den jeweiligen Wirtsgeweben zu untersuchen. Außerdem wird die Rolle der bekannten Anfälligkeitsfaktoren, der Histo-Blutgruppenantigene, untersucht werden. Sobald dieses Explantatsystem etabliert ist, wird es die Untersuchung der Norovirusrezeptoren, der Anheftungsfaktoren und anderer Wirtsfaktoren beim Menschen und bei nichtmenschlichen Tierarten ermöglichen. Das System wird auch für die Untersuchung anderer Darmviren mit zoonotischem Potenzial nützlich sein, einschließlich Coronaviren, Influenzaviren und hunde- und schweinespezifischen Noroviren.

Es soll ein aktivierbares fluoreszierendes Reportersystem für Mückenzellen entwickelt werden, das durch die virale Protease aktiviert wird. Es wird den Nachweis von Virusinfektionen ohne die Zugabe von weiteren Reagenzien ermöglichen. Ein solches System konnte bereits in Säugetierzellen etabliert werden, um z. B. SARS-CoV-2-Infektionen nachzuweisen. In diesem Pilotprojekt soll das flipGFP-Reportersystem für den Einsatz in Mückenzellen anpasst und optimiert werden. Dazu werden zelluläre Proteine identifiziert, die mit den viralen Proteasen der beiden Modellviren, Zika virus (Flavivirus) und Sindbis virus (Alphavirus), interagieren. Frühere Arbeiten haben gezeigt, dass die Proteolyse durch virale Proteasen hauptsächlich um ER-Membranen herum stattfindet. Die Kandidaten werden als Fusionsproteine mit dem flipGFP-Reporter getestet, um die Proteolyse und damit die Aktivierung durch die virale Protease zu erhöhen. Zusammen mit dem zellulären Fusionsprotein wird das Reporterkonstrukt weiter optimiert, um die Spaltung von flipGFP durch die beiden viralen Proteasen zu kontrollieren und zu erhöhen. Nach der Optimierung wird der Reporter mit konventionellen Methoden, wie Plaque-Assays oder qRT-PCR, verglichen. Schließlich wird die Plattform in einem Proof-of-Concept-Screening um nachgeschaltete Assays für die generierten Reporterzellen untersucht werden. Im Pilotprojekt werden hauptsächlich flipGFP-Mückenreporterzelllinien für den Nachweis von Arbovirusinfektionen etabliert. Diese Plattform wird ein wichtiges Instrument für viele Anwendungen sein, z. B. für die Diagnostik, die Entwicklung von Therapeutika oder für Ansätze der Grundlagenforschung zum besseren Verständnis von Arbovirusinfektionen im Insektenwirt. Es werden Proteomics, Fluoreszenzmikroskopie, Molekularbiolgie, Virologie und weitere Methoden verwendet.

In den letzten Jahren wurde zunehmend erkannt, dass Moore wichtige ökologische Funktionen im Naturhaushalt erfüllen und von großer Relevanz für das Klima sind. Demzufolge werden zukünftig, unter Berücksichtigung der Ziele zum Klimaschutz, eine Vielzahl von Moorwiedervernässungsprojekten in Deutschland verwirklicht werden, bisher ohne die Berücksichtigung epidemiologischer Grundsätze. Beim Entstehen von Infektionskrankheiten treffen grundsätzlich drei Systeme zusammen – Erreger, Wirt und Umwelt, die gemeinsam wirken und sich gegenseitig beeinflussen. Durch anthropogene Eingriffe in Ökosysteme, wie die Wiedervernässung von Mooren, werden natürliche Bruthabitate für Stechmücken geschaffen, die als Reservoire und Vektoren vieler bedeutender Zoonoseerreger in Erscheinung treten können und vor allem bei den Anwohnern zu Bedenken über eine Zunahme von Stechmücken und der Ausbreitung von Stechmücken-assoziierten Zoonosen wie dem West-Nil-Fieber führen. Wissenschaftliche Daten, auf dessen Grundlage sich diese Bedenken stützen, gibt es nicht. Mit diesem Projekt wollen wir dazu beitragen, eine Datengrundlage zur Bewertung des zukünftigen Risikos des Auftretens von Stechmücken-assoziierten Krankheiten, insbesondere Zoonosen, und der Zunahme von Stechmücken in wiedervernässten Mooren zu schaffen.

Fledermäuse sind natürliche Reservoire für verschiedene virale Zoonoseerreger, darunter hochpathogene Filoviren wie das Marburg-Virus (MARV) und das Ebola-Virus, die Erreger des viralen hämorrhagischen Fiebers beim Menschen. Die Reservoirkompetenz von Fledermäusen hängt von ihrer Fähigkeit ab, Viren zu beherbergen, ohne dass Symptome oder Pathologie auftreten. Ein vorgeschlagener Mechanismus für ihre Reservoirkompetenz ist die "Immuntoleranz", die eine streng kontrollierte antivirale Immunantwort und eine unterdrückte entzündungsfördernde Signalgebung beinhaltet. Bei Säugetieren sind myeloide Zellen wie dendritische Zellen (DC) und Makrophagen (Mph) professionelle antigenpräsentierende Zellen (APC), die die Immunantwort des Wirts auf eine Infektion steuern. Sowohl DC als auch Mph sind auch wichtige erste Ziele von Filoviren. Wichtig ist, dass Filovirus-Infektionen zu einer Störung der Zellantworten von menschlichen DC und Mph führen. Im Gegensatz dazu wurde kürzlich gezeigt, dass Fledermaus-DCs aus dem natürlichen MARV-Reservoir R. aegyptiacus eine ausgeprägte antivirale Immunantwort gegen MARV auslösen und proinflammatorische Reaktionen wie das Zytokin IL-33 deutlich unterdrücken. Ob Fledermaus-Mph eine ähnlich unterdrückte IL-33-Antwort zeigen wie Fledermaus-DCs und ob menschliche myeloische Zellen nach einer Infektion mit MARV oder EBOV im Gegensatz dazu eine erhöhte IL-33-Freisetzung aufweisen, ist unbekannt. Dieses Projekt zielt daher darauf ab, von Fledermäusen abgeleitete Mph aus zwei bekannten Fledermausreservoiren von Filoviren zu differenzieren und zum ersten Mal die IL-33-Antworten von Fledermaus-DCs und Mphs auf MARV und EBOV in vitro mit denen von Menschen zu vergleichen, was eine einmalige Gelegenheit bietet, die zugrundeliegenden Unterschiede in den Immunzellreaktionen von Menschen und Fledermäusen auf zwei der hochpathogenen viralen Zoonosen zu verstehen.

Virus- und Wirtszellproteine stehen während einer Infektion miteinander in einer Reihe von molekularen Wechselwirkungen. Dieses Virus-Wirt-Interaktom ist für jedes Virus und jede Wirtsart einzigartig. Viele Wirtszellfaktoren werden während einer Infektion zur Virusausbreitung ausgenutzt. Gleichzeitig werden antivirale Faktoren induziert, die auf verschiedene virale Proteine wirken und die Virusproduktion unterdrücken. Dieses Projekt zielt darauf ab, neue Faktoren zu identifizieren, die die Ausbreitung von zwei pathogenen Viren entweder fördern oder unterdrücken: das Gelbfiebervirus (YFV) und das Severe Acute Respiratory Syndrome Coronavirus 2 (SARS-CoV-2). Um dies zu erreichen werden aus Zielgewebe dieser Viren - menschliche Leber und Lunge sowie Fledermauslunge - extrahierte mRNAs verwendet. Diese mRNA-Pools werden in lentivirale Vektoren kloniert, um komplementäre DNA (cDNA)-libraries zu erstellen, die einen gewebespezifischen Pool von Proteinen kodieren. Diese cDNA-libraries werden in ausgewählte Zelllinien transduziert, und der Pool der eingeschleusten Gene exprimiert mRNAs und Proteine, die durch Gesamt-RNA-Sequenzierung quantifiziert werden. Die veränderten Zelllinien werden dann für "loss-of-function"- oder "gain-of-function"-Screening unter der Verwendung von lebendem YFV und SARS-CoV-2 genutzt. Nach dem Screening werden überlebende Zellen in Bezug auf eine Zunahme oder Verringerung der Virusinfektionsraten bewertet. Wird eine Veränderung festgestellt, können die verantwortlichen Faktoren durch RNA-Sequenzierung identifiziert werden, indem die Häufigkeiten aller von der Library gelieferten Genprodukte in der Zellpopulation vor und nach dem Screening verglichen werden. Ziel dieses Projektes ist es, menschliche Faktoren zu identifizieren, die die Virusausbreitung erleichtern und therapeutische Ziele darstellen könnten. Außerdem sollen Faktoren von Mensch und Fledermaus identifiziert werden, die infektionsinduziertes Krankheitsgeschehen verhindern.

Brucellose ist eine weltweit verbreitete zoonotische Erkrankung verursacht durch Bakterien der Gattung Brucella. In den letzten Jahren wurden Brucella-Arten identifiziert, die phylogenetisch einen Übergang zwischen den ihnen sehr ähnlichen, weitverbreiteten Umweltbakterien der Gattung Ochrobactrum und den hochpathogenen, klassischen Brucella-Arten bilden. Das Virulenzpotenzial dieser neuen, atypischen (atyp.) Brucella-Arten und die von ihnen ausgehende Gefährdung für Mensch und Tier ist jedoch unbekannt. In eitrigen Geschwüren und Lungen von Patienten konnten jedoch bereits atyp. Brucella nachgewiesen werden. Ebenso wenig ist geklärt, wie gut sie außerhalb der bekannten Wirtsorganismen persistieren können, welche Faktoren für das Überleben dieser Brucella-Arten in der Umwelt eine Rolle spielen und welches das Hauptreservoir dieser atyp. Brucella-Arten ist. Atyp. Brucella-Arten wurden u. a. aus Nagetieren, Reptilien, Fischen und Fröschen, sowie Erdproben isoliert, weshalb anzunehmen ist, dass diese Bakterien an die Ökologie in Böden und Gewässern adaptiert sind. Ebenso besteht die Möglichkeit, dass die atyp. Brucella-Arten speziell an das Überleben in Amöben, phagozytierende freilebende Einzeller, die in beiden Habitaten vorkommen, angepasst sind. Diese könnten, wie bereits für andere Bakterien beschrieben, einen möglichen Rückzugsort zum Schutz gegen negative Umweltbedingungen darstellen. Ähnlich wie bei klassischen Brucella-Arten, die Zuflucht in Makrophagen zum Schutz gegen das Immunsystem des Wirts suchen. Im Projekt BruceFit4Infect werden das Überleben und das Wachstum der atyp. Brucella-Arten in Ab- und Anwesenheit sowie innerhalb von Amöben untersucht. Im Ergebnis dieses Projekts wird folglich ermittelt, ob Amöben eine mögliche ökologische Nische für diese Brucella-Arten darstellen, wodurch eine erste Abschätzung des Expositions- und Gesundheitsrisikos für Mensch und Tier durch die wenig charakterisierten, atyp. Brucella-Arten möglich sein wird.

Das Rubellavirus (RuV), der Erreger der seit mehr als 200 Jahren bekannten Röteln des Menschen, galt lange Zeit als einziger Vertreter der Gattung Rubivirus (Familie Matonaviridae). Erst kürzlich wurden jedoch zwei weitere Rubiviren bei Tieren identifiziert, was einen zoonotischen Ursprung des RuV nahelegt. Das Ruhuguvirus (RuhV) wurde in Maulabstrichen augenscheinlich gesunder Zyklopen-Rundblattnasenfledermäuse in Uganda nachgewiesen, während das Rustrelavirus (RusV) zuerst in einem Zoo in Mecklenburg-Vorpommern in den Gehirnen von Zootieren verschiedener Spezies detektiert wurde, die mit einer nicht-eitrigen Enzephalitis verendet oder euthanasiert worden waren. Als Reservoirwirt des RusV wird die Gelbhalsmaus (Apodemus flavicollis) angenommen, in deren Populationen das Virus an verschiedenen Standorten in Norddeutschland ebenfalls nachgewiesen wurde. Beide neuentdeckte Rubiviren sind nicht nur genetisch mit dem humanen RuV verwandt, sondern es werden auch antigenetische Ähnlichkeiten vermutet. Aus dieser engen Verwandtschaft und dem außerordentlich breiten Wirtsspektrum des RusV ergeben sich die folgenden Fragestellungen, die im Rahmen dieses Projekts bearbeitet werden sollen: Besitzt RusV zoonotisches Potenzial und kann es auch Menschen infizieren und bei ihnen Enzephalitiden hervorrufen? Gibt es zwischen den Rubiviren eine serologische Kreuzreaktivität, aufgrund derer eine Immunität gegen das RuV auch eine Kreuzprotektion gegen andere Rubiviren bieten könnte? Die im Pilotprojekt etablierten Methoden und Ergebnisse werden erste wichtige Aussagen zum Zoonoserisiko des RusV sowie ggf. weiterer neuer Rubiviren erlauben und bilden die Basis für weiterführende Arbeiten. Diese sollen unter anderem die Analyse von Kreuzprotektivitäten im Tiermodell sowie Untersuchungen zur Verbreitung von RusV bei Menschen und Tieren in Deutschland zum Ziel haben.

Infektionen mit dem Hepatitis E-Virus (HEV) können zu einer akuten Hepatitis beim Menschen führen. Bei Transplantationspatienten tritt oft eine chronische Hepatitis auf, die häufig zu einer lebensbedrohlichen Leberzirrhose führt. Die Zahl der gemeldeten Hepatitis E-Fälle in Deutschland ist in den letzten Jahren kontinuierlich gestiegen. Hier kommt vor allem der HEV-Genotyp 3 (GT3) vor, der in Schweinen weit verbreitet ist und zoonotisch auf den Menschen übertragen werden kann. Vor einigen Jahren wurde von dieser Arbeitsgruppe ein weiteres HEV (ratHEV) in Ratten entdeckt, das eine weltweite Verbreitung in verschiedenen Rattenarten hat. RatHEV ist nur wenig mit dem HEV-GT3 verwandt. Seit 2018 wird ratHEV auch bei vereinzelten humanen Hepatitis-Patienten, vor allem in Hongkong, nachgewiesen. Ziel des Projektes ist die Ermittlung des zoonotischen Potenzials des ratHEV, dessen Zirkulation in Ratten sowie der Übertragung des Erregers auf den Menschen in Deutschland. Hierzu sollen in diesem Doktorandenprojekt in einem interdisziplinären Team aus Ärzten, Tierärzten und Biologen verschiedene Untersuchungen durchgeführt werden. Hepatitis-Patienten, Blutspender und Rattenproben aus Deutschland sollen untersucht werden, um den Umfang der derzeitigen ratHEV-Zirkulation festzustellen. Ein infektiöser genomischer Klon aus einem humanen ratHEV-Isolat aus Hongkong soll hergestellt werden, dessen Infektiösität und Pathogenität mit einem Klon einer Ratte aus Hamburg sowie mit HEV-GT3 verglichen werden soll. Neben Zellkultur-Studien soll hierfür ein humanisiertes Maus-Modell eingesetzt werden. Die Untersuchungen sollen zeigen, ob ratHEV in Patienten und Ratten aktuell in Deutschland vorkommt, und klären, ob das zoonotische Potenzial von Stämmen aus Deutschland mit solchen aus Hongkong vergleichbar ist. Die Ergebnisse sollen einen Beitrag zur Klärung des Zoonose-Potenzials eines neuen Erregers leisten, der möglicherweise gerade dabei ist, vom Tier auf den Menschen überzugehen.

Obwohl auf Genomebene in Fledertieren eine Vielzahl von Viren nachgewiesen wurden, gibt es nur eine geringe Zahl, die in infektiöser Form vorliegen. Da der Nachweis von Fledertierviren sehr häufig aus Kotproben erfolgt, sollten differenzierte Darmzellen die Zielzellen vieler dieser Viren sein, weshalb sie für die Isolierung von Fledertierviren aus Kotproben besonders geeignet erscheinen. Primäre Darmepithelzellen waren lange sehr schwierig in Kultur zu halten, da sie eine kurze Lebensdauer haben und die Bedingungen für Vermehrung über mehrere Passagen unbekannt waren. Dies änderte sich grundlegend, durch den Befund, dass die in den Darmkrypten befindlichen intestinalen Stammzellen beliebig vermehrt werden können, wenn entsprechende Wachstumsfaktoren zur Verfügung gestellt werden. Damit war die Grundlage für die Etablierung von intestinalen Organoidkulturen gelegt. In diesem Projekt geht es darum, intestinale Organoidkulturen von Fledertieren zu erzeugen. Nach der Etablierung sollen diese Zellen für Infektionsversuche genutzt werden. Die Auswahl der Spendertiere richtet sich nach den in deutschen Einrichtungen verfügbaren Fledertierkolonien und nach Viren, über die in Deutschland gearbeitet wird. An der Tierärztlichen Hochschule Hannover wird am Institut für Zoologie zu Forschungszwecken eine Kolonie der Fledertierspezies Carollia perspicillata gehalten. Tiere dieser Spezies sollen als Organspender dienen, da sie zu den empfänglichen Wirtstieren für Fledermaus-Influenzaviren gehören. Über diese Viren wird durch die Arbeitsgruppe von Prof. Martin Schwemmle intensiv gearbeitet. Dort liegt das Virus in rekombinanter Form vor. Nach der Etablierung der intestinalen Organoid-Kulturen kann das System dann ausgeweitet werden auf andere Fledermaus-Spezies, die für Fledermaus-Viren relevant sind, und auch ausgeweitet werden auf Zwischenwirte, die für die Übertragung auf Menschen von Bedeutung sind.

Die Anzahl der in Wirtstieren identifizierten Hantaviren steigt beständig. Das Risikopotenzial dieser Viren für die menschliche Gesundheit ist unbekannt. Dieses Forschungsprojekt beschäftigt sich daher mit einem in vitro-Modell zur Vorhersage des Gefährdungspotenzials durch Hantaviren. Pathogene Vertreter der eurasischen Hantaviren lösen hämorrhagisches Fieber mit renalem Syndrom (HFRS) aus. HFRS ist gekennzeichnet durch akutes Nierenversagen und durch große Variabilität in der Erkrankungsschwere je nach Virus. Verantwortliche Virulenzfaktoren sind bislang nur wenig charakterisiert. In Vorarbeiten konnte das hantavirale Nukleokapsidprotein (N-Protein) als virus- und zelltypspezifische Pathogenitätsdeterminante identifiziert werden. Durch die Infektion von humanen Nierenzellen in vitro kommt es zu einer Hemmung der Motilität der Zellen. Das Ausmaß der Inhibition ist für Hantaanvirus (HTNV) stärker als für Puumalavirus (PUUV), was auch dem klinischen Bild der beiden Viren entspricht. Die virusspezifische Funktionsstörung ist auch beobachtbar, wenn nur das N-Protein in Nierenzellen exprimiert wird. Somit stellt das N-Protein einen Pathogenitätsfaktor dar, dessen Analyse der Einschätzung der Pathogenität neuer Hantaviren dienen könnte. Daher soll in diesem Forschungsvorhaben untersucht werden, ob das Ausmaß der Motilitätsstörung durch das N-Protein jeweils mit der Erkrankungsschwere von Hantaviren mit bekannter Pathogenität übereinstimmt. Dazu soll die Motilität in einer Nierenzelllinie, die mit Hantaviren unterschiedlicher Pathogenität infiziert bzw. mit dem entsprechenden N-Protein transfiziert wurde, untersucht werden. Die Testung der N-Proteine von unterschiedlich pathogenen Hantaviren erlaubt eine klare Entscheidung, ob eine Assoziation zwischen dem Effekt von N-Protein auf die Motilität und der Pathogenität besteht. Somit würde diese in vitro-Analyse erstmalig eine Risikoeinschätzung der in Nagern identifizierten Hantaviren erlauben.

Der Zoonoseerreger Streptococcus equi spp. zooepidemicus (SEZ) besiedelt als opportunistisches Pathogen die mukosalen Oberflächen von Pferden und anderen Haus- und Nutztieren. Durch direkten Tierkontakt wurde wiederholt eine Übertragung auf den Menschen beschrieben. Gerade in industrialisierten Ländern kommt es aber auch immer wieder zu schweren Krankheitsbildern, wie Septikämien, Meningitiden und auch Endokarditiden, die auf einen direkten Kontakt zu sogenannten companion animals (u.a. Pferde, Hunde, Katzen und Meerschweinchen) zurückzuführen sind. Über die Pathogenitätsmechanismen dieses Zoonosekeims ist bislang nur wenig bekannt. Im Rahmen dieses interdisziplinären Promotionsprojektes sollen daher Mechanismen und Faktoren identifiziert und charakterisiert werden, die zur Pathogenese einer Endokarditis im Menschen beitragen. Dabei konzentriert man sich auf die frühen Infektionsstadien und im Speziellen den Vorgang der bakteriellen Adhärenz an primäre Endokardzellen untersuchen. Dazu wird ein hoch-komplexes Zellkulturinfektionsmodell im Mikrofluidiksystem genutzt, das die Simulation der Scherkräfte des Blutstromes an der Herzklappe ermöglicht. Nach Infektion dieser Zellen unter definierten Scherstress-Parametern mit fluoreszierenden SEZ, erlaubt die konfokalmikroskopische Visualisierung qualitative und quantitative Aussagen über den Adhärenzprozess der Bakterien an das Endokard in Echtzeit. Zur Identifizierung der dafür beteiligten bakteriellen Faktoren, wird eine auf einer Negativselektion-basierenden Transposonmutagenese eingesetzt und bioinformatisch analysiert. Die Erkenntnisse sollen zudem durch einen Ganzgenom-basierten Ansatz mit 120 klinischen SEZ Isolaten aus Mensch und Pferd auf Populationsebene übertragen und somit auf epidemiologisch breiter Basis analysiert werden.

Zoonotische Erreger wie Mycobakterium tuberculosis complex (MTC) führen sowohl im Nutztier, Wildtier als auch im Menschen zu tödlich verlaufenden chronischen Lungenerkrankungen. Die Impfstoffentwicklung konzentriert sich jedoch hauptsächlich auf Lösungsvorschläge für eine bestimme Spezies. Im Sinne des OneHealth Konzepts sollte ein zoonotischer Impfstoff hohe Priorität haben. Projekte, die Impfstoffe hinsichtlich ihres Potenzials in verschiedenen Wirten zoonotischer Erkrankungen untersuchen gibt es nur unzureichend. Das Projekt OneHealth Vakzine VRP hat das Ziel die Immunantwort in verschiedenen Säugetier-Immunzellen gegen die zoonotische virus-like-particle (VRP) Vakzine zu untersuchen. Dieser vergleichende Ansatz ist limitiert durch Methoden, die in mehreren Spezies vergleichend angewandt werden können. Hier bietet die single cell RNAseq Technologie die Möglichkeit mit Hilfe des Transkriptoms einzelner Zellen systematisch die Immunantwort gegen VRP zu testen. Deswegen werden in diesem Pilotprojekt Immunzellen aus Rindern, Mäusen und dem Menschen isoliert und mit fluoreszierenden VRPs in vitro infiziert. Die Immunantwort wird durch die Analyse des Transkriptoms jeder einzelnen infizierten Zelle aus den drei verschiedenen Spezies mit einander verglichen. Zudem gibt das Projekt Auskunft über die Einsetzbarkeit dieser Methode in Nutztieren und somit für die zoonotische Forschung.

Alle bisher am Klassischen Bornavirus (BoDV-1) erkrankten und verstorbenen Patienten stammten aus Bayern. Deshalb möchte das Projekt "Bornavirus-Focal Point Bayern" die Häufigkeit und Relevanz solcher Infektionen mit dem Fokus Bayern untersuchen. Dafür soll am Staatlichen Landratsamt, Gesundheitsamt des Landkreises und der Stadt Regensburg in Kooperation mit dem Bayerischen Landesamt für Gesundheit und Lebensmittelsicherheit (LGL) und dem Institut für Klinische Mikrobiologie und Hygiene, Universitätsklinikum Regensburg, die Stelle eines Humanmediziners eingerichtet werden. Das Projekt wird vom Bayerischen Staatsministerium für Gesundheit und Pflege unterstützt und dockt sich an das vom Bundesministerium für Bildung und Forschung geförderte Zoonotische Bornavirus-Consortium (ZooBoCo) an. Gemeinsam mit den Veterinärämtern in Bayern soll das virale Reservoir der Spitzmäuse charakterisiert und Wege der Übertragung auf den Menschen weiter erforscht werden. In Kooperation mit klinischen Kolleginnen und Kollegen sollen Patienten mit Enzephalitis und besonders gefährdete Patientengruppen wie Immunsupprimierte nach Organtransplantation untersucht werden. Um zukünftige Fälle frühzeitig zu erkennen und einer möglichen Behandlung zuführen zu können, soll an der Entwicklung, Optimierung und Validierung einer schnellen und qualitätsgesicherten BoDV-1 Diagnostik mitgearbeitet werden. Die beantragte Stelle soll in Kooperation mit dem LGL die Fallsuche vor Ort in Bayern koordinieren und durch Sammlung von Daten Risikofaktoren für die Übertragung von BoDV-1 auf den Menschen identifizieren. Damit soll die epidemiologische Aufarbeitung der Fälle durch das LGL und das Robert Koch-Institut unterstützt werden. Schließlich möchte das Projekt den Öffentlichen Gesundheitsdienst (ÖGD), die Ärzteschaft im Endemiegebiet und die Bevölkerung gemeinsam mit ZooBoCo informieren, für das Thema BoDV-1 sensibilisieren und Maßnahmen zur Vermeidung zukünftiger Infektionen entwickeln.

Allein in Deutschland erkranken pro Jahr über eine halbe Million Menschen an einer Lungenentzündung. Auch in der Schweinehaltung führen Atemwegsinfektionen zu einer Krankheitslast und hohen wirtschaftlichen Verlusten. Dabei stellt die Entstehung von resistenten Erregern neue Herausforderungen an die Human- und Veterinärmedizin. Zur Entwicklung neuer Behandlungsstrategien ist das Verständnis der Wirt-Erreger-Interaktionen in komplexen Ko-Infektionsmodellen elementar. Influenza-A-Virus (IAV) Infektionen und bakterielle Ko-Infektionen sind als eine Kombination für schwere Krankheitsverläufe bei Mensch und Schwein beschrieben. Die bakteriellen Erreger sind oftmals Kommensale des oberen Atemtraktes und der Tonsillen. Häufig sind die Auslöser für bakterielle Lungeninfektionen mit schwerem akutem Verlauf unklar. In unseren Vorarbeiten haben wir interessanterweise für einige humane und porcine bakterielle Lungenerreger einen unerwarteten Phänotyp im Zusammenhang mit DNA-Netzen ("neutrophil extracellular traps, NETs") identifiziert. Dieser spezielle Abwehrmechanismus von Neutrophilen wird aus extrazellulären DNA-Strukturen der Neutrophilen gebildet und ist ursprünglich als eine antimikrobielle Strategie gegen Infektionserreger beschrieben. Unsere Daten zeigen, dass NETs einigen bakteriellen Erregern als Lieferant für Wachstumsfaktoren wie z. B. NAD dienen und somit eine Vermehrung von NAD-abhängigen Bakterien im Wirt verbessern. Damit wird die Aussage der antimikrobiellen Wirkung von NETs für einige Erreger in Frage gestellt. Dieser Phänotyp wird stärker, wenn DNasen vorhanden sind, die das Grundgerüst der NETs verdauen und somit den NETs Abbau im Wirt regulieren. Da IAV NETs induzieren können, soll die Wirt-Erreger Interaktion bei Ko-Infektionen von IAV und bakteriellen Erregern in Mensch und Schwein mit dem Fokus auf die Rolle der NETs untersucht werden. Die Kernfrage ist, inwiefern IAV-induzierte NETs-Bildung die Ausbreitung von bakteriellen Ko-Infektionen triggert.

Vorhersagen von Einflussgrößen, die den Verlauf einer Epidemie durch infektiöse Erreger bestimmen und letztlich die Wirkung von Gegenmaßnahmen abschätzen lassen, sind bislang nur ungenügend möglich. Daher wurde im Rahmen eines interdisziplinären Pilotprojekts ein agentenbasiertes Simulationswerkzeug an der WWU Münster in einem Kooperationsprojekt des Instituts für Virologie und Informatikern vom Lehrstuhl für Wirtschaftsinformatik entwickelt. Die Software ist ein erstes IT-Produkt der Zoonosenplattform und stellt aufgrund ihrer modularen Konzeption und leichten Bedienbarkeit eine Innovation im Bereich der agentenbasierten Simulation von Epidemien dar. Der enorme Umfang der Konfigurationsmöglichkeiten stellt allerdings auch eine Herausforderung dar, um realitätsnahe und validierbare Modelle zu erzeugen. In vielen Fällen wird dazu ein sehr fundiertes Domänenwissen vom Anwender vorausgesetzt und umfangreiche vorherige Recherchen zur Abschätzung von Einflussgrößen sind nötig. Das vorliegende Querschnittsprojekt hat daher zum Ziel, gemeinsam mit einer ersten Auswahl an Projektpartnern eine Spezialisierung und Ausdifferenzierung der Software hinsichtlich verschiedener Erreger und Forschungsfragen (Influenza-, Corona-, Hantaviren, Plasmodien) zu erreichen. Die drei Kernprojektbereiche staffeln sich nach zunehmender Komplexität der geplanten Modellierung wie folgt: 1) Ausbreitung zoonotischer Erreger innerhalb der Humanpopulation (Influenza-/Coronaviren), 2) Unidirektionale zoonotische Übertragung.

Im Projekt sollen die Parasiten Cryptosporidium parvum und Toxoplasma gondii über eine neuartige Bestrahlungsmethode attenuiert und als Impfstoffkandidaten getestet werden. Bei Impfstoffen gegen Parasiten muss eine effiziente Immunantwort gegen mehrere Entwicklungsstadien des Erregers induziert werden. Die wenigen Vakzinen in diesem Bereich bestehen daher aus attenuierten Parasiten, welche zwar noch eine Infektion auslösen, sich aber nicht mehr vollständig entwickeln können. Eine der effizientesten Methoden Parasiten zu attenuieren besteht in der ionisierenden Strahlung. Diese schädigt DNA, lässt den Organismen aber noch genügend Aktivität für eine subklinische Infektion. Bisherige Bestrahlungstechniken haben jedoch Nachteile, die eine breite Nutzung für Impfstoffe bisher ausgeschlossen haben. Am Fraunhofer IZI wurde eine neue Methode entwickelt, Krankheitserreger in Flüssigkeiten zu bestrahlen, die niederenergetische Elektronenstrahlung (LEEI), welche viele Vorteile gegenüber dem Stand der Technik aufweist. LEEI soll nun auf C. parvum und T. gondii angewandt und für die Etablierung effizienter Impfstoffkandidaten weiterentwickelt werden. Im Tier wird die Wirksamkeit getestet. Zusätzlich wird ein Bestrahlungsprozess etabliert, der die Basis für die weitere Entwicklung eines Impfstoffs liefern soll.

In den letzten Jahren wurden neben Arboviren, die eine ernsthafte Bedrohung für die öffentliche Gesundheit darstellen, eng verwandte Viren aus der gleichen Virusfamilie beschrieben, welche durch ihre Insektenspezifität als nicht-humanpathogen oder wirbeltierpathogen angesehen werden. Diese Apathogenität gegenüber Mensch und Wirbeltier macht die insektenspezifischen Viren zu einem interessanten Modell für Arboviren, deren Evolution und Wechselwirkung mit Vektoren. Insektenviren haben weiterhin das Potenzial Arbovirus-Übertragungen zu hemmen und so direkt zu einer Verbesserung der öffentlichen Gesundheit beizutragen. In dieser Studie soll eine interdisziplinäre Herangehensweise, bestehend aus virologischer, verhaltensbiologischer und ökologischer Sicht, einen Fortschritt in der Vektorkontrolle erzielen. Hierbei soll die Interaktion von Culex pipiens molestus Mücken mit Insektenviren und insektiziden Wirkstoffen näher erforscht und die Anwendbarkeit einer solchen trilateralen Interaktion in der integrierten Stechmückenbekämpfung untersucht werden.

Gezielte Desinfektionsstrategien zur Keimreduktion bilden die wichtigste Säule der Prävention bakterieller Infektionskrankheiten. Allerdings birgt der Einsatz von Desinfektionsmitteln und Antiseptika (Bioziden) auch Gefahren. Vergleichbar mit Antibiotika können diese Substanzen weniger empfindliche Mikroorganismen selektieren. Außerdem besteht die Gefahr, dass Bakterien unter dem Einfluss von Desinfektionsmitteln Antibiotikaresistenzen ausbilden. Wie können zukünftig Desinfektionsmittel in der Lebensmittelproduktion und im Krankenhaus eingesetzt werden, ohne die Sicherheit von Patienten und Verbrauchern zu gefährden? Im Projekt BiozAR werden Daten zur Empfindlichkeit des zoonotischen Erregers Escherichia coli gegenüber im Krankenhaus und entlang der Lebensmittelkette verwendeten Desinfektionsmitteln erhoben. Verglichen werden Isolate unterschiedlicher Herkunft: a) aus der gesunden Bevölkerung, b) von Patienten im Krankenhaus, c) von kolonisierten Tieren und d) kontaminierten Lebensmitteln. Mit Hilfe von Korrelationsanalysen werden wir mögliche Zusammenhänge zwischen verminderter Biozidempfindlichkeit und erhöhter Antibiotikaresistenz nachweisen. Dadurch erhalten wir Hinweise, inwieweit Biozide tolerante E. coli selektieren und zur Anreicherung von Antibiotikaresistenzen beitragen. Molekularbiologische Untersuchungen sollen zeigen, ob subinhibitorische Biozidkonzentrationen resistenzkodierende Plasmide in E. coli mobilisieren. Statistische Methoden zur Vorhersage von Resistenzen auf Grundlage von Genomdaten sind in der Antibiotikaforschung bereits in Erprobung. Wir werden untersuchen, ob und inwieweit eine Vorhersage von Biozidtoleranzen basierend auf publizierten und im Rahmen unseres Projekts erhobenen Datensätzen möglich ist. Perspektivisch kann der entwickelte Algorithmus zum Aufbau einer Biozidtoleranz-Datenbankplattform genutzt werden, mit deren Hilfe zukünftig die Auswahl effektiver Desinfektionsmittel und Antiseptika zielgerichtet unterstützt werden kann.

Ziel des Vorhabens ist die Etablierung eines primären, komplexen Zellkultursystems, in dem hochrein aufgereinigte Neurone, Astrozyten und Mikroglia miteinander kombiniert werden (sog. NAM-System). Das System soll unter physiolgischen Bedingungen charakterisiert und unter Infektionsbedingungen mit dem Zoonoseerreger Listeria monocytogenes evaluiert werden.

Für die Entwicklung neuer therapeutischer Ansätze ist ein besseres Verständnis der molekularen Mechanismen der Wirt-Pathogen-Interaktion unabdingbar. Bemerkenswert ist der Ansatz, dass Zellen und Gewebe für die meisten Studien in vitro oder ex vivo standardmäßig unter atmosphärischen Sauerstoffkonzentrationen (20-21%) kultiviert werden, obwohl diese in den meisten Geweben in vivo deutlich niedriger sind. Im Falle einer Infektion und der daraus resultierenden Entzündung kommt es zu einer massiven Absenkung der Sauerstofflevel, zu einer sogenannten Hypoxie. Leider gibt es bisher unzureichende Daten darüber, wie stark die Sauerstoffwerte im infizierten Gewebe tatsächlich absinken, um diese Bedingungen dann auch für molekulare und zelluläre in vitro-Versuche umsetzen zu können. Das Ziel dieser Studie ist es, die physiologisch und pathophysiologisch relevanten Sauerstofflevel im Laufe einer bakteriellen zoonotischen Infektion zu detektieren, um diese für in vivo nahe Studien der Wirt-Pathogen-Interaktion anwenden zu können. Im Fokus des Versuchsvorhabens steht als Beispiel die Erforschung der Interaktion von Streptococcus (S.) suis als zoonotischer Krankheits- und Modellkeim mit dem Schwein als natürlichen Wirt sowie das Modell für die S. suis Meningitis beim Menschen. Es ist zunächst das erste Ziel, die Sauerstofflevel während in vivo-Tierversuchen in der Zerebrospinal-Flüssigkeit genau zu charakterisieren. Zusätzlich sollen die Systeme für die Sauerstoffmessungen auch für weitere Gewebetypen in vivo angepasst und etabliert werden, um die technische Expertise zukünftig Kooperationspartnern zur Verfügung stellen zu können. Schließlich sollen im Labor etablierte porcine und humane in vitro-Systeme an die in vivo detektierten physiologischen und pathophysiologischen Sauerstofflevel für Studien der Wirt-Pathogen-Interaktion sowie der Suche nach neuen therapeutischen Ansätzen angepasst werden.

Innerhalb weniger Jahre ist ein neuer Typ des Dermatophyten Trichophyton benhamiae zum häufigsten zoonotischen Hautpilz in Deutschland aufgestiegen. Er besiedelt Meerschweinchen und wird auf Menschen übertragen. Da Dermatophyten nicht meldepflichtig sind, gibt es keine flächendeckenden Daten zu ihrer Verbreitung und Häufigkeit. Hier soll eine solche Datenerhebung für T. benhamiae erfolgen und zur Identifizierung von Ausbreitungsfaktoren genutzt werden. Dazu wird eine deutschlandweite Befragung von Tierärzten und Dermatologen zu aktuellen Fallzahlen des Pilzes durchgeführt. In Meerschweinchenzuchten werden Haltungsbedingungen protokolliert sowie Proben entnommen und molekularbiologisch untersucht. Anhand dieser Daten sollen Faktoren für Übertragung und Persistenz der Erreger in Zuchten identifiziert und Sanierungskonzepte für die betroffenen Bestände erarbeitet werden. Die Daten bilden die Grundlage für das langfristige Ziel ein Surveillance-System für zoonotische Dermatophyten zu etablieren.

In den vergangenen Jahren haben Infektionskrankheiten, deren Erreger durch Arthropoden übertragen werden, in der Zoonosenforschung an Bedeutung gewonnen. Zahlreiche Forschungsvorhaben fokussierten sich auf die Diversität der Arthropoden, deren Rolle als Erregerreservoir und ihre experimentelle Vektorkompetenz. Im Hinblick auf die Entwicklung innovativer Bekämpfungsstrategien stellt sich jedoch ebenso die Frage nach den Auswirkungen einer Infektion auf den Arthropodenvektor. Diese Studie zielt darauf ab, Transkripte im Mitteldarm von Ornithodoros moubata in drei verschiedenen physiologischen Zuständen (naïv, blutgesogen & Borrelia duttonii infiziert) zu untersuchen, die den Prozessen der Blutverdauung, Erregeraufnahme und der Immunität gegenüber B. duttonii zugrunde liegen. Ziel ist es, Gene zu identifizieren, die im jeweiligen physiologischen Zustand differentiell exprimiert werden und demzufolge eine Schlüsselstellung einnehmen.

Bakterien treten hauptsächlich in Form von Biofilmen auf und sind in eine Vielzahl von Infektionen in der Human- und Veterinärmedizin involviert. Auch zoonotische sowie resistente Infektionserreger sind oftmals an diesen hochkomplexen Gemeinschaften beteiligt. Der enge Kontakt zwischen verschiedenen Spezies begünstigt den horizontalen Gentransfer, so dass Virulenz- und Resistenzfaktoren auf mobilen genetischen Elementen in diesem Milieu rasch Verbreitung finden. Seit 2017 ist bekannt, dass Bakterien in Biofilmen über ultraschnelle elektrische Impulse in Form von Kalium-Ionen kommunizieren (e-signalling). Unter anderem kann ein metabolischer Gleichklang erzeugt werden, indem sich das Wachstum der Gemeinschaft graduell innerhalb kürzester Zeit an sich ändernde Umweltbedingungen anpasst. Diese Kommunikation kann sowohl in einem Biofilm, zwischen mehreren Biofilmen und zwischen Biofilmen und planktonischen Bakterien stattfinden. Diese spezielle Anpassung von Bakterien könnte eine mögliche Ursache dafür sein, dass sich bestimmte multiresistente Infektionserreger bei Mensch und Tier gleichermaßen erfolgreich verbreiten. Ziel dieses Pilotprojektes ist daher die Ressourcen-sparende Etablierung eines neuartigen Systems zur Visualisierung und Untersuchung von e-signalling in Biofilmen pathogener Bakterien, um dieses innovative Forschungsfeld für die Zoonoseforschung im Sinne des "One-Health"-Gedankens zu erschließen.

Die Toxoplasmose ist eine durch den Parasiten Toxoplasma (T.) gondii verursachte Zoonose. Nach postnataler Infektion verläuft diese bei Erwachsenen und Immunkompetenten zumeist asymptomatisch. Die kongenitale Infektion kann beim Neugeborenen jedoch zu schwerwiegenden Symptomen insbesondere des Gehirns führen. Im pränatalen Gehirn liegen zum Infektionsverlauf von T. gondii keine detaillierten Daten vor. Für die humane kongenitale Toxoplasmose steht momentan kein geeignetes Tiermodell zur Verfügung. Aufgrund spezies-spezifischer Charakteristika ist das Meerschweinchen als Tiermodell für die kongenitale Toxoplasmose besonders geeignet. Ziel des Projekts ist es, das Meerscheinchen als Modelltier für die humane kongenitale Toxoplasmose zu etablieren und zu validieren. Im Rahmen der Studie soll der Zusammenhang zwischen der Infektionsdosis, dem Infektionszeitpunkt während der Trächtigkeit, der fetalen Inkubationsdauer, der transplazentaren Übertragungsrate, der Parasitenlast und dem Schweregrad der Symptomatik im neonatalen bzw. fetalen Kortex ermittelt werden. Zudem werden erstmalig Informationen über den Zelltropismus von T. gondii im fetalen Kortex bereitgestellt. Das fetale und neonatale Gewebe wird mittels qPCR, pathomorphologischer Untersuchung, Immunhistochemie und konfokaler Fluoreszenzmikroskopie untersucht. Die Ergebnisse werden auf Tagungen der Deutschen Gesellschaft für Parasitologie und Symposien der Nationalen Zoonosenplattform vorgestellt. Das fetale Organ- und Plazentagewebe wird als Probensammlung archiviert und anderen Wissenschaftlern zur Verfügung gestellt. Die Etablierung und Validierung des Meerschweinchenmodells für die kongenitale Toxoplasmose schafft die Voraussetzung für die Untersuchung weiterer wissenschaftlicher Fragestellungen u. a. zur Pathogenese, Diagnostik und Therapie der Erkrankung.

Neu auftauchende Krankheiten stellen ein ernstzunehmendes Gesundheitsrisiko für den Menschen dar. Während viele Viren, die ursprünglich in tierischen Wirten zirkulieren, mittlerweile in der menschlichen Population weit verbreitet sind, ist der Mensch für viele zoonotische Viren ein sogenannter Fehl- oder nicht definitiver Wirt. Bei Infektionen mit letztgenannten Viren unterbleibt in der Regel eine effiziente Übertragung von Mensch zu Mensch. Durch genetische Veränderungen getrieben entwickeln sich Viren jedoch weiter und erschließen neue Wirtsorganismen. Genetische Plastizität und enorme Populationsgrößen erlauben RNA-Viren den Übergang in alternative Wirtsorganismen, die außerhalb ihres gewöhnlichen Verbreitungswegs bzw. endemischen Zyklus sind. Die zugrundeliegenden genetischen Faktoren für dieses "Entwischen" und die Akquirierung neuer Wirte sind bislang nicht ausreichend verstanden. Virale Sequenzen von mit zoonotischen Pathogenen infizierten Menschen bieten Einblicke in eine entscheidende Phase der Adaption an einen neuen Wirtsorganismus und sind von unschätzbarem Wert für das Verständnis neu entstehender Infektionen. Bislang sind solche wichtigen Sequenzinformationen rar, da es häufig schwierig oder unmöglich ist, virale Sequenzen von ausreichender Qualität aus klinischen Proben zu gewinnen. Übergeordnetes Ziel des Projekts ist es, Einblicke in den Prozess der Adaption von Viren im menschlichen Wirt zu erlangen. Dabei sollen virale Populationen vor und nach dem Übertritt vom Tier zum Menschen untersucht werden, um damit den evolutionären Flaschenhals, den die Überwindung der Speziesbarriere darstellt, besser zu verstehen. Während des Projekts werden die genetische Vielfalt von zwei zoonotischen Viren, dem Puumala-Virus und dem MERS-Coronavirus in menschlichen und tierischen Proben untersucht. Im Fall des MERS-Coronavirus wird zusätzlich die Entwicklung der genetischen Vielfalt nach Eintritt in den menschlichen Wirt im Laufe der Zeit verfolgt.

Viele Krankheitserreger infizieren die Atemwege oder nutzen den Respirationstrakt für eine Initialinfektion, um sich dann auf andere Gewebe und Organe auszubreiten. Dies gilt auch für Zoonoseerreger. Sofern diese viralen oder bakteriellen Infektionserreger ihren natürlichen Wirt nicht in einer Nutztierspezies wie Rind oder Schwein haben, ist es sehr schwierig, das Infektionsverhalten im Ursprungswirt zu analysieren. Von Wildtierspezies gibt es keine oder nur wenige immortalisierte Zelllinien. Weiterhin treffen die Mikroorganismen im Respirationstrakt auf die Epithelbarriere, die aus differenzierten Zellen besteht, die es nicht als immortalisierte Zellen gibt. Für Atemwegszellen vom Menschen oder von häufigen Nutztieren wurden primäre Kultursysteme für differenzierte respiratorische Epithelzellen beschrieben. Dazu gehören Air-liquid-interface-Kulturen und Lungenpräzisionsschnitte (PCLS). Beide sind geeignet, um sie auf Tierarten anzuwenden, die weniger leicht zugänglich sind für die Gewinnung von Gewebe zu Untersuchungszwecken. In dem Projekt PHOCA-PCLS geht es darum, PCLS von Seehunden als Modellspezies für Wildtiere zu erzeugen. Ziel ist es, ein ex vivo-Kultursystem für die Zoonosenforschung zu etablieren, mit dem auch weniger zugängliche Tierspezies wie Seehunde für Infektionsstudien mit Atemwegszellen zugänglich werden. Mit den Projektergebnissen soll die Basis dafür gelegt werden, dass zukünftig auch andere für die Zoonosenforschung wichtige Wildtierspezies für die Forschung zugänglicher werden, indem PCLS von ihrer Lunge erzeugt werden. Dabei ist das Anwendungspotenzial nicht auf die Grundlagenforschung beschränkt. Interessant sind PCLS auch für die Isolierung neuer Viren, für antivirale und antimikrobielle Studien sowie für Untersuchungen im Zusammenhang mit Ersatz- und Ergänzungsmethoden zu Tierversuchen.

Das Auftreten neuartiger zoonotischer Viren stellt eine große Herausforderung für das öffentliche Gesundheitswesen dar. Um schneller auf diese Herausforderungen reagieren zu können, ist ein umfassendes Verständnis zoonotischer Ereignisse in der Vergangenheit notwendig. Bislang wird die genetische Vielfalt heute vorkommender Pathogene genutzt, um Rückschlüsse auf zurückliegende zoonotische Übertragungsmomente zu ziehen. Die Nutzung von alter DNA (aDNA), ermöglicht die Einbeziehung der genetischen Vielfalt in der Vergangenheit vorkommender Krankheitserreger und stellt so eine sinnvolle Erweiterung der bisherigen Herangehensweise dar. Bisher ist jedoch unklar, ob virale aDNA aus normalem Gewebe/Knochen isoliert werden kann. Dieses Pilotprojekt beleuchtet diese Frage zum ersten Mal systematisch.

In dem Vorhaben soll ein in vitro-Hautpilzinfektionsmodell basierend auf Meerschweinchenhaut als alternative Tierversuchsmethode entwickelt werden. Als Hautpilz wird in diesem Modell gezielt ein neuartiger und aktuell bedeutungsvoller infektiöser Hautpilz (Trichophyton benhamiae) untersucht, der Hautinfektionen bei Tieren und Menschen - insbesondere Kindern - verursachen kann. Nach Etablierung der Gewebekulturmethode erfolgt die Infektion von Meerschweinchenhaut in Kultur (in vitro) mit dem Hautpilz.

Durch die Einbindung verschiedenster Fachdisziplinen werden praxisorientierte Modelle entwickelt, die auf Grundlage einer Gefährdungsabschätzung und einer Verwundbarkeits-Analyse, die räumliche, zeitliche und ökonomische Risikobewertung vektorübertragener Zoonosen ermöglichen. Förderung des Nachwuchses ist zentraler Bestandteil des Projektes. Die erarbeiteten Softwarelösungen werden in einer Science School vorgestellt und auf einer Onlineplattform dokumentiert zugänglich gemacht.